原创作者：英拜生物|circRNA微信公众号

环状RNA（circRNA）是一类非编码RNA，其在调节基因表达和许多病理反应中起重要作用。然而，三阴性乳腺癌（TNBC）中circRNA的表达谱和功能尚未可知。

近日，发表在《Theranostics》（IF=8.537）上的一篇名为《circEPSTI1 as a Prognostic Marker and Mediator of Triple-NegativeBreast Cancer Progression》的文章研究了人类circRNA在TNBC组织中的表达谱，并鉴定出circEPSTI1（hsa_circRNA_000479）是显着上调的circRNA。该团队进行circRNA微阵列分析以筛选TNBC的circRNA表达谱，并进一步研究了circEPSTI1，通过敲低三种TNBC细胞系中的circEPSTI1观察了circEPSTI1对TNBC增殖，克隆形成和凋亡的影响。基于MRE分析和荧光素酶报告基因测定，发现circEPSTI1作为miRNA海绵和miRNA的共靶基因与miRNA结合，并在小鼠中进行异种移植实验以证实这些发现。同时，通过ISH评估了240名TNBC患者的circEPSTI1水平。

结果显示，敲低circEPSTI1抑制TNBC细胞增殖并诱导细胞凋亡。体外和体内实验表明，circEPSTI1作为miRNA海绵与miR-4753和miR-6809结合，以调节BCL11A表达并影响TNBC的增殖和凋亡。高水平的circEPSTI1与TNBC患者的存活率降低相关。circEPSTI1-miR-4753/6809-BCL11A通过竞争性内源RNAs（ceRNA）机制影响三阴性乳腺癌的增殖和凋亡。此外，将circEPSTI1鉴定为TNBC患者存活的独立的预后标志物。

技术路线

结果

图1. TNBC中的差异环状RNA的鉴定。

（A）三对人TNBC癌组织和邻近正常组织中差异表达的circRNA的聚类热图。上调（红色）或下调（绿色）的circRNA分别呈现。（B）TNBC癌组织与邻近正常组织中circRNA表达比较的火山图。红点代表circRNA上调或下调了1.5倍，P值<0.05。（C）散点图用于评估TNBC癌组织和邻近正常组织之间circRNA表达的变化。绿线是倍数变化线。（D）差异表达的circRNA在染色体上的分布规则。（E）TNBC中差异表达circRNA的基因组起源。（F）EPSTI1基因和circEPSTI1的基因组位点。通过qRT-PCR检测circEPSTI1的表达，并通过Sanger测序验证。（G）通过qRT-PCR测定乳腺正常细胞系和乳腺癌细胞系中circEPSTI1的表达水平。倍数变化基于β-肌动蛋白进行标准化。（H）37对TNBC样本和相应的正常邻近组织中circEPSTI1的表达水平。（I）用RNase R处理MDA-MB-231细胞后，circEPSTI1和EPSTI1 mRNA的qRT-PCR分析。（J）放线菌素D处理后MDA-MB-231细胞中circEPSTI1和EPSTI1 mRNA的qRT-PCR分析。

图2. circEPSTI1的沉默抑制TNBC生长和增殖并诱导细胞凋亡。

（A）circEPSTI1的siRNA特异性反向剪接点的位点示意图。（B）用两种siRNA处理后circEPSTI1和EPSTI1 mRNA表达的qRT-PCR分析。（C-E）用对照或circEPSTI1 siRNA转染的MDA-MB-231，BT549和MDA-MB-468细胞的CCK-8测定。（F-H）用对照或circEPSTI1 siRNA转染的MDA-MB-231，BT549和MDA-MB-468细胞集落形成的测定。（I）用对照或circEPSTI1 siRNA转染的MDA-MB-231，BT549和MDA-MB-468细胞中使用EdU评估DNA合成。（J）膜联蛋白V-FITC/碘化丙啶染色和FACS定量经特定处理后的MDA-MB-231，BT549和MDA-MB-468细胞中的凋亡细胞数。** P <0.01。

图3. circEPSTI1充当miR-4753和miR-6809的miRNAs海绵。

（A）circEPSTI1中miR-4753和miR-6809预测位点的示意图。（B-C）用加扰对照，miR-4753类似物，miR-6809类似物，miR-4753 + miR-6809类似物，对照-LNA，miR-4753-LNA，miR-6809-LNA或miR-4753 + miR-6809-LNA和含有circEPSTI1野生型或miR-4753和miR-6809结合位点突变结构的荧光素酶报告基因（circEPSTI1-mut）共转染的HEK 293T细胞的荧光素酶测定。* P <0.05；** P <0.01。（D）用加扰对照，miR-4753类似物，miR-6809类似物或miR-4753 + miR-6809类似物转染后circEPSTI1的qRT-PCR分析。（E）用NC+对照-LNA，si-crEPSTI1-1+对照-LNA，NC + miR-4753 + miR-6809-LNA或si-crEPSTI1-1 + miR-4753 + miR-6809-LNA转染的MDA-MB-231的集落形成的测定。（F）用NC+对照-LNA，si-crEPSTI1-1+对照-LNA，NC + miR-4753 + miR-6809-LNA或si-crEPSTI1-1 + miR-4753+ miR-6809-LNA转染的MDA-MB-231细胞的5-乙炔基-2'-脱氧尿苷（EdU）测定。

图4. BCL11A是miR-4753和miR-6809的直接靶基因，并且被circEPSTI1敲低所抑制。

（A）基于三种算法（TargetScan（TS），MIRDB和TARGETMINER TM）表示miR-4753和miR-6809的共靶基因重叠得Venn图。Venn图工具可从http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/Venn/获得。（B）miR-4753和miR-6809在BCL11A mRNA的3'UTR上预测位点的示意图。（C-D）用加扰对照，miR-4753类似物，miR-6809类似物，miR-4753 + miR-6809类似物，对照-LNA，miR-4753-LNA，miR-6809-LNA或miR-4753 + miR-6809-LNA和含有BCL11A-3'UTR野生型或miR-475和miR-6809结合位点突变（BCL11A-3'UTR-mut）的荧光素酶报告基因结构共转染的HEK 293T细胞的荧光素酶测定。（E）用加扰对照，miR-4753类似物，miR-6809类似物，miR-4753 + miR-6809类似物，对照-LNA，miR-4753-LNA，miR-6809-LNA或miR-4753 + miR-6809-LNA转染后BCL11A mRNA的qRT-PCR分析。（F-G）通过Western杂交测定miR-4753 / miR-6809类似物或miR-4753 / miR-6809抑制剂对MDA-MB-231细胞中BCL11A蛋白表达的影响。（H）敲低circEPSTI1对MDA-MB-231细胞中BCL11A蛋白表达的影响。

图5. circEPSTI1-miR-4753/6809-BCL11A影响TNBC体内生长和增殖。

将（A）MDA-MB-231，（B）BT549和（C）MDA-MB-468细胞皮下注射到裸鼠中并进行不同处理（即加扰或si-cEPSTI1-1）。绘制肿瘤的生长曲线。** P <0.01。（D）小鼠异种移植模型中的肿瘤。（E）异种移植肿瘤的重量。（F）通过免疫组化分析异种移植肿瘤，并呈现BCL11A，caspase-2和ki-67表达的典型图像。比例尺=50μm。

图6. circEPSTI1与BCL11A表达正相关，并充当TNBC的预后因子。

（A）TNBC组织微阵列数据分析（n = 240），证明了circEPSTI1与BCL11A的线性回归和显著Pearson相关性。（B）circEPSTI1的典型H＆E和原位杂交图像和两个TNBC病例中的BCL11A表达的免疫组化图像（200× 比例尺=100μm；400× 比例尺=50μm;）。（C-D）高水平的circEPSTI1与DFS和OS减少相关（circEPSTI1 low n = 157；circEPSTI1 high n = 83）。（E-F）给出了circEPSTI1和BCL11A表达的四种可能组合的DFS和OS曲线。高水平的circEPSTI1和BCL11A与存活率降低相关（circEPSTI1 low/BCL11A low n = 119；circEPSTI1 high/BCL11A low n = 50；circEPSTI1 low/BCL11A high n = 39；circEPSTI1 high/BCL11A high n = 32）。